Biologinis mikroskopas apie audinių bloko tūrį
Biologinis mikroskopas su kondensatoriumi gali judinti kondensatorių aukštyn ir žemyn, kad jo šviesumas būtų vidutinis, taip pat galima pakeisti kintamo šviesos analizatoriaus diafragmą, kad būtų pasiektas vidutinis 9b ryškumas. Jei šviesa yra saulėje, kondensatorius gali būti atitinkamai pakeltas, o kintamo optinio triukšmo diafragma gali būti atitinkamai padidinta. Jei šviesa per stipri, galima atitinkamai nuleisti kondensatorių ir atitinkamai sumažinti sankryžos apertūrą. Jei tokiu atveju vis tiek jaučiatės apakinti, galite pasirinkti tinkamą filtrą ir uždėti jį ant laikiklio po kondensatoriumi. Šis tussah gali įgauti jus tenkinančio ryškumo. Žinoma, norint pakeisti optinio rodmens diafragmos dydį ir parinkti tinkamus filtrus, reikia įgyti patirties po tam tikro laikotarpio reguliuojant kondensatoriaus viršutinę ir apatinę padėtį.
Labai svarbi biomikroskopo problema yra ta, kad 65 elementų kiekis kiekvienoje dalyje po džiovinimo šalčiu ir dervos įterpimo (FD) bei džiovinimo šalčiu turi būti kruopščiai tvarkomas, kad nebūtų pažeistos stebimos ir analizuojamos ląstelės. Kadangi rentgeno mikroanalizė apima ne tik daug etapų, bet ir kainuoja daug, labai apgailestaujama padaryti klaidingą išvadą, jei tiriamos ląstelės yra pažeistos arba po ilgalaikio ir kelių etapų gydymo negyvos ląstelės. Pavyzdžiui, kolagenazės būdu atskirtos miokardo ląstelės yra dviejų formų: viena yra ilga lazdelė, o kita - apvali. Pastaroji yra mirštanti ląstelė, kuri pažeidžiama ląstelių atskyrimo metu.
Elektrolitų kiekis ir pasiskirstymas šiose dviejose ląstelėse biologiniu mikroskopu labai skiriasi. Apvaliose miokardo ląstelėse Na yra labai daug, o K labai mažai, o linijiniuose dendrituose yra labai didelė ca koncentracija. Palyginti su kitais analitiniais metodais, įrodyta, kad didelis Na ir mažas K kiekis žiedinėse ląstelėse ir didelis ca mitochondrijose yra ląstelės membranos pažeidimo rezultatas ląstelių atskyrimo metu. Ląstelių ir audinių šalto fiksavimo metodas dažnai yra pirmiausia juos fiksuojant gesinant, o po to laikyti skystame azote. Gesinanti fiksacija yra labai svarbi konservavimo efektui. Gyvose ląstelėse arba šviežiuose audiniuose gausu vandens. Gesinant dažnai būna, kad pirmiausia užšaldomos ir fiksuojamos tos ląstelių ar audinių dalys, kurios tiesiogiai liečiasi su krioprotektoriais (ypač gesinant skystu azotu), taip susidaro „apvalkalas“, kuris trukdo užšalti ir fiksuoti centrinę. ląstelių dalis. Todėl atliekant rentgeno mikroanalizę dažnai nustatoma, kad didesnių ląstelių centre yra ledo kristalų. Kad taip neatsitiktų, kaip aušinimo priemonė naudojama medžiaga, kurios lydymosi temperatūra aukštesnė nei skysto azoto, bet džiovinimo temperatūra žemesnė nei 806c. Tokių medžiagų yra daug, tačiau lengviausiai pasiekiamas yra koncentruotas propanas (virimo temperatūra-42．120c, lydymosi temperatūra-187．10c, molekulinė masė-44.1), kurio greičiausias aušinimo greitis. Tačiau jo trūkumas yra degumas.
Biologinis mikroskopas gali padėti raumenų skaidulą ant specialaus rėmo, o kai raumenų skaidulos susitraukia iki tam tikros fazės ir ją reikia fiksuoti, antgalis nedelsiant paleidžiamas, kad skystas propanas užpurškiamas ant raumenų skaidulos, kad užgesintų ir fiksuotų. tai. Tada raumenų skaidulos išimamos kartu su stovu ir sudedamos į skystą azotą. Jei kraujo ląstelės arba atskirtos ląstelės yra fiksuotos, pirmiausia centrifuguokite mažu greičiu, kad koncentruotumėte ląsteles, perkelkite ląsteles į sidabrinį mažą vamzdelį, turintį gerą šilumos laidumą, ir įdėkite mažą vamzdelį į skystą propaną, kad užšaldytų ir pritvirtintų. Fiksuojant žiurkės kasą Hall laboratorijoje, du plieniniai blokai buvo iš anksto atšaldyti skystu heliu (arba skystu azotu), o du variniai blokai prieš ir už kasos buvo dedami replėmis, kad tetos buvo užgesintos ir pritvirtintos. Audinys ar ląstelės gali būti saugomi ilgą laiką po to, kai jie yra gesinami, fiksuojami ir perkeliami į skystą azotą.
